有絲分裂。稱作衛星細胞的肌原細胞，相互融合在一起，形成多核的肌管細胞(myotubue cell)。隨著肌管細胞內肌原纖維的數量增加，肌管細胞成為骨骼肌細胞。成熟的骨骼肌細胞是一種有絲分裂后細胞，不能進行有絲分裂。
所以，雖然通過C6H15O12P3消化可進行傳代3～4次，但如果發生分化，融合形成肌管，則很難再傳代下去。同樣，一旦細胞開始融合，細胞增殖也很難評估。
以下所述為肌肉活檢組織酶消化法。來自健康人活檢的初代培養材料，富含肌原細胞，初代培養在Ham12補加20%胎牛血清培養條件下，很易生長。
但原代骨骼肌細胞培養的難點就在于它的純化，因為成肌細胞和成纖維細胞混雜生長很難區分。在常規培養條件下，這些細胞能夠增殖和分化融合形成多核細胞的肌管，證明培養的細胞有成肌性。
【材料】
1.組織來源健康人肌肉活檢組織。
2.培養用試劑
(1)培養液Ham F12。
(2)PBS。
(3)(Pronase)液：0.15%和0.03% EDTA，帶有20U/ml和20 ug/ml的(0.4% Eurobio PES3000)，溶在100ml Ham F12或PBS中。
3.培養基配方和制備Ham F12加20%胎牛血清。
4.實驗器材100um過濾網、手術刀、眼科剪、眼科鑷、培養皿(切割用)、培養瓶、血細胞計數器和離心管。
【方法】
1.取材用剪刀剪除活檢組織的非肌組織，用PBS抗生素緩沖液沖洗3次。按與肌肉纖維平行方向切割成小塊，在稱量之前用PBS沖洗3次。把組織小塊擺放在平皿上，切成lmm3大小的碎塊，不要擠壓造成傷害，用PBS沖洗3次，棄掉上清。
2.消化在37℃液中消化1小時(1～3mg組織需要15 ml消化液)，每3～5分鐘搖晃或吸管吹打使細胞分離。用吸管吹打消化物，使更多的細胞分散下來，培養液應變得越來越渾濁。加入含20%胎牛血清的生長培養基終止消化，讓組織塊慢慢沉到管底。
3.分離細胞集合所得上清液，用100um過濾網濾過入20ml離心管中，進行800r/min離心8～10分鐘，吸出上清液棄掉。加10ml生長培養液重懸沉積物，用吸管輕輕吹打，然后用計數器計數細胞。
4.接種與培養用生長培養基稀釋懸液，接種入培養瓶中，細胞密度1.5x104個/ml。把培養瓶置入37℃,5% CO2細胞培養箱中培養。
【結果】
體外培養的骨骼肌細胞，經顯微鏡鑒定，剛分離出的原代細胞比較小，呈球形，折光性強。12小時后，細胞開始貼壁，72小時后貼壁，貼壁后絕大多數逐漸延展成為梭形，少數有突起，為不規則狀，換液可在培養3天后進行，隨著培養時間的延長，細胞增殖、遷移并逐漸規律性地沿一個方向排列。
一旦細胞長滿整個培養瓶，產生接觸抑制，增殖將明顯受到抑制，表現為相鄰細胞相互融合，形成肌小管，即表現出分化傾向。
初始形成的肌小管的多個細胞核沿細胞中心排列，形成中心核鏈，而合成的少量肌原纖維則位于周邊。隨著分化的繼續，肌原纖維大量生成，逐漸占據細胞中的部位，迫使中心核鏈的核移向周邊，即形成幼稚肌纖維。另外還可以用組織塊法培養，約1周可見組織塊周圍有梭形的細胞爬出，但只是部分組織塊周圍有細胞。
透射電鏡下觀察，分裂增殖早期的骨骼肌細胞核含核仁1～3個，細胞質中有不規則分布的束狀平行排列的肌絲，部分區域肌絲尚未形成，并有少量幼稚線粒體。
早期細胞內有長梭形高電子密度結構，呈散在分布;晚期細胞胞質肌絲更豐實，但無明顯肌節形成，可見分化較成熟的線粒體、糖原和游離核糖體聚集于肌束周邊，使豐實的肌絲呈束狀平行排列。
